產(chǎn)品介紹：

基因治療研究、藥物靶點(diǎn)高效篩選

 

德國進(jìn)口Lonza Nucleofector 384孔高通量細(xì)胞核轉(zhuǎn)染系統(tǒng)（384-well Nucleofector System，原HT Nucleofector System，簡稱384孔核轉(zhuǎn)儀），具備Nucleofector技術(shù)快速處理、高轉(zhuǎn)染效率、高細(xì)胞活力的特點(diǎn)，每孔可設(shè)置不同的轉(zhuǎn)染程序，實(shí)現(xiàn)1~384樣品同時(shí)轉(zhuǎn)染，滿足CRISPR/Cas9基因編輯篩選、藥物靶點(diǎn)研究等高通量轉(zhuǎn)染的需求。



2021年是Lonza Nucleofector高效細(xì)胞核轉(zhuǎn)染技術(shù)面世20周年，作為非病毒轉(zhuǎn)染方法，大量成功用于原代細(xì)胞、干細(xì)胞、神經(jīng)元、難轉(zhuǎn)染細(xì)胞系中，文獻(xiàn)引用超過10,000篇，多年來幫助推動(dòng)基因治療研究、細(xì)胞治療研究、研究的發(fā)展。

Lonza 384孔核轉(zhuǎn)儀，作為獨(dú)立的轉(zhuǎn)染平臺(tái)，由一個(gè)轉(zhuǎn)染384孔板的工作模塊、一個(gè)提供高壓脈沖的電源模塊、一個(gè)用于設(shè)置轉(zhuǎn)染參數(shù)的PC端操作軟件組成，耗材使用配套384孔電轉(zhuǎn)板nucleocuvete plate（24×16），每孔為20μL體系，每一個(gè)孔可分別設(shè)置*不同的轉(zhuǎn)染程序，1min內(nèi)完成全部384個(gè)不同樣本的快速轉(zhuǎn)染，同時(shí)具備高轉(zhuǎn)染效率、高通量、高重復(fù)性的特點(diǎn)，廣泛應(yīng)用于陣列cDNA、RNAi、CRISPR文庫篩選中，成為藥物靶點(diǎn)、疾病機(jī)理研究的高效研發(fā)工具。




 

Lonza 384孔核轉(zhuǎn)儀優(yōu)勢

1、高效轉(zhuǎn)染——采用LonzaNucleofector細(xì)胞核轉(zhuǎn)染技術(shù)，通過針對每種細(xì)胞特殊優(yōu)化的電轉(zhuǎn)染程序，大幅提升轉(zhuǎn)染效率，通過細(xì)胞特異性轉(zhuǎn)染液、無鋁離子毒害的新型聚合物電極，構(gòu)建溫和轉(zhuǎn)染環(huán)境，提升轉(zhuǎn)染效率的同時(shí)，提高轉(zhuǎn)染后細(xì)胞活力，維持細(xì)胞功能完整。

2、高通量，快速處理——每1個(gè)孔均可設(shè)置特定轉(zhuǎn)染程序，可同時(shí)運(yùn)行384個(gè)不同程序，實(shí)現(xiàn)真正的高通量轉(zhuǎn)染。1min內(nèi)可完成1個(gè)384孔板的滿板轉(zhuǎn)染，可旋轉(zhuǎn)操作盤能夠處理2個(gè)384孔板，實(shí)現(xiàn)快速、規(guī)?；幚?。



3、低成本——每孔轉(zhuǎn)染細(xì)胞數(shù)量2E4~1E6個(gè)，可用較低的細(xì)胞和耗材成本進(jìn)行高通量的實(shí)驗(yàn)優(yōu)化。

4、線性放大規(guī)模——使用384孔核轉(zhuǎn)儀摸索的優(yōu)化轉(zhuǎn)染條件，可直接用于Lonza其他大體積核轉(zhuǎn)儀模塊中，線性放大實(shí)驗(yàn)成果。

5、自動(dòng)化處理——384孔電轉(zhuǎn)板符合SBS標(biāo)準(zhǔn)，可無縫對接自動(dòng)化液體處理系統(tǒng)，提高實(shí)驗(yàn)整體效率，減少人為誤差。 



 
 

技術(shù)參數(shù)：

	尺寸	重量
工作模塊	40 cm × 42 cm × 15 cm (15.7 × 16.5 × 5.9 英寸)	10 kg (22.04 磅)
電源模塊	13.5 cm × 50 cm × 45 cm (5.3 × 19.6 × 17.7 英寸)	14 kg (30.86 磅)

產(chǎn)品應(yīng)用：

參考文獻(xiàn)

1. Gordon, D., Hiatt, J., Bouhaddou, M. et al. Comparative host-coronavirus protein interaction networks reveal pan-viral disease mechanisms. Science, 370, 6521 (2020). /doi/10.1126/science.abe9403#F5

2. Mac Kain, A., Maarifi, G., Aicher, S. et al. 2021. Identification of DAXX As A Restriction Factor Of SARS-CoV-2 Through A CRISPR/Cas9 Screen. /content/10.1101/2021.05.06.442916v1.full

3. Obara, E.A.A., Aguilar-Morante, D., Rasmussen, R.D. et al. SPT6-driven error-free DNA repair safeguards genomic stability of glioblastoma cancer stem-like cells. Nat Commun 11, 4709 (2020). https://doi.org/10.1038/s41467-020-18549-8

4. Monkley, S., Overed-Sayer, C., Parfrey, H. et al. Sensitization of the UPR by loss of PPP1R15A promotes fibrosis and senescence in IPF. Sci Rep 11, 21584 (2021). https://doi.org/10.1038/s41598-021-00769-7

5. Tong, Y., J?rgensen, T.S., Whitford, C.M. et al. A versatile genetic engineering toolkit for E. coli based on CRISPR-prime editing. Nat Commun 12, 5206 (2021). https://doi.org/10.1038/s41467-021-25541-3

 

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