主要功能

• 單獨(dú)或同步測量葉綠素?zé)晒夂?P700

• 兩個光系統(tǒng)的誘導(dǎo)動力學(xué)曲線（包括快相和慢相）

• 兩個光系統(tǒng)的快速光曲線和光響應(yīng)曲線

• 淬滅分析、暗馳豫分析

• 典型的 P700 曲線測量

• 通過葉綠素?zé)晒夂?nbsp; P700 的同步測量獲知兩個光系統(tǒng)的電子傳遞動力學(xué)、電子載體庫的大小、圍繞 PSI 的環(huán)式電子傳遞動力學(xué)等

• 通過測量 P515/535 信號變化測量跨膜質(zhì)子動力勢 pmf 及其組分跨膜質(zhì)子梯度 ΔpH 和跨膜電位 Δψ

• “P515 Flux”信號能原位反映活體樣品處于穩(wěn)態(tài)的偶聯(lián)電子和質(zhì)子的流動速率

• 通過測量 NADPH 熒光估算 NADP 的還原程度

• 通過測量 9-AA 熒光來估算跨膜質(zhì)子梯度 ΔpH

測量參數(shù)

• PS II參數(shù)：  Fo, Fm, F, Fm’, Fv/Fm, Y(II) 即 △F/Fm’, Fo’, qP, qL, qN, NPQ, Y(NPQ), Y(NO) 和 ETR(II) 等

• PS I參數(shù)：   P700, Pm, Pm’, P700red, Y(I), Y(ND), Y(NA) 和 ETR(I) 等

• P515/535參數(shù)：質(zhì)子動力勢pmf，跨膜質(zhì)子梯度 ΔpH，跨膜電位 Δψ 等

• NADPH/9-AA參數(shù)：NADP 的還原程度，ΔpH 等

• 其他測量參數(shù)：Post-Illumination（鼓包），PQ-Pool（PQ庫）等

應(yīng)用領(lǐng)域

相當(dāng)于兩臺 PAM-101/ 102/ 103 的功能，可同時測量光系統(tǒng)II活性（調(diào)制葉綠素?zé)晒猓┖凸庀到y(tǒng)I活性（P700 吸收變化），可用于、植物生理學(xué)、農(nóng)學(xué)、林學(xué)、園藝學(xué)等領(lǐng)域光合作用機(jī)理研究。

擴(kuò)展模塊 P515/535 可測量跨膜質(zhì)子動力勢 pmf 及其組分跨膜質(zhì)子梯度 ΔpH 和跨膜電位 Δψ 等，是葉綠素循環(huán)和光保護(hù)研究的工具。

擴(kuò)展模塊NADPH/9-AA，可測量 NADPH 熒光和 9-AA 熒光，估算 NADP 的還原程度和跨膜質(zhì)子梯度 ΔpH。

主要技術(shù)參數(shù)

• 主機(jī)：通用型（DUAL-C），可接標(biāo)準(zhǔn)檢測器，可擴(kuò)展 P515/535，NADPH/9AA 等多種模塊。

• P700 雙波長測量光：LED，830 nm 和 875 nm

• PSII 熒光測量光：LED，460 nm（DUAL-DB）或 620 nm（DUAL-DR）

• 紅色光化光：LED 陣列，635 nm；連續(xù)光強(qiáng) 3000 μmol m^-2 s^-1

• 藍(lán)色光化光：LED，460 nm；連續(xù)光強(qiáng) 1100 μmol m^-2 s^-1

• 單周轉(zhuǎn)飽和閃光（ST）：200000 μmol m^-2 s^-1，5～50 μs 可調(diào)

• 多周轉(zhuǎn)飽和閃光（MT）：20000 μmol m^-2 s^-1，1～1000 ms 可調(diào)

• 遠(yuǎn)紅光：720nm

選購指南

一、高等植物葉片測量基本款

系統(tǒng)組成：通用型主機(jī)，標(biāo)準(zhǔn)版檢測單元，數(shù)據(jù)線，工作臺，軟件等

注意：高等植物葉片測量紅光檢測器（Dual-DR）和藍(lán)光檢測器（Dual-DB）可任選其一

二、懸浮樣品測量基本款

系統(tǒng)組成：通用型主機(jī)，標(biāo)準(zhǔn)版檢測單元，懸浮液的光學(xué)單元，數(shù)據(jù)線，工作臺，軟件等

注意：藻類測量時，藍(lán)藻請選擇紅光檢測器（Dual-DR），其他藻類可選藍(lán)光檢測器（Dual-DB）

三、其他擴(kuò)展模塊

擴(kuò)展測量一：P515/535模塊

	P515/535 模塊是 WALZ 公司為 DUAL-PAM-100 設(shè)計的測量模塊，可以直接連接 DUAL-PAM-100 的主機(jī)，測量 550-510 nm 的差式吸收以及 535 nm 波長的信號變化。P515/535 模塊可以測量光合器官的跨膜質(zhì)子動力勢（pmf）、跨膜電位（Δψ）、跨膜質(zhì)子梯度（ΔpH）和玉米黃素（Zea）變化等內(nèi)容。此外，該模塊還提供一種特殊的 “P515 Flux” 操作模式，可讓光化光以光-暗脈沖形式打開-關(guān)閉（1/1調(diào)制光/暗），原位測量活體樣品處于穩(wěn)態(tài)的偶聯(lián)電子和質(zhì)子的流動速率。
	通過測量 P515 變化得出質(zhì)子動力勢（pmf）兩個組分 Δψ 和 ΔpH	通過測量535 nm變化得出質(zhì)子動力勢（pmf）及其組分ΔpH	同步測量P515和535 nm信號的光響應(yīng)曲線

擴(kuò)展測量二：NADPH/9-AA 模塊

NADPH/9-AA 模塊是 WALZ 公司為 DUAL-PAM-100 設(shè)計的測量模塊，可以直接連接 DUAL-PAM-100 的主機(jī)，測量 NADPH 熒光和 9-AA 熒光。NADPH 熒光可用于估算 NADP 的還原程度，9-AA 熒光用于估算跨膜質(zhì)子梯度 ΔpH。該模塊的一個很大特色是與標(biāo)準(zhǔn)探頭聯(lián)用，在國際上次做到了同步測量葉綠素?zé)晒馀c NADPH 熒光。

NADPH 探頭圖示		同步測量 NADPH 熒光（藍(lán)色）與葉綠素?zé)晒猓?span style="color: rgb(255, 0, 0);">紅色）

擴(kuò)展測量三：與光合儀 GFS-3000 聯(lián)用

同步測量 P700、葉綠素?zé)晒馀c氣體交換 同步測量 P700、葉綠素?zé)晒馀c氣體交換的暗-光誘導(dǎo)曲線 同步測量 P700、葉綠素?zé)晒馀c氣體交換的光響應(yīng)曲線和 CO2 響應(yīng)曲線 典型的氣體交換測量，如光合作用、蒸騰作用、呼吸作用 典型的葉綠素?zé)晒鉁y量，如誘導(dǎo)曲線、快速光曲線、淬滅分析、暗馳豫等 典型的 P700 曲線測量 葉綠素?zé)晒馀c P700 的快速誘導(dǎo)動力學(xué)等 編程進(jìn)行復(fù)雜的同步或獨(dú)立測量 可升級增加同步測量 P515/535 的功能	專為 DUAL-PAM-100 與 GFS-3000 的同步測量設(shè)計，由特制葉室（帶溫度和PAR傳感器）、風(fēng)扇、導(dǎo)光桿、電子盒與支架構(gòu)成。同步測量時，光源由 DUAL-PAM-100 的測量頭提供，氣體交換由 GFS-3000 的紅外分析器檢測，P700 和葉綠素?zé)晒庥?DUAL-PAM-100 的檢測器測量。

四、其他可選附件

1，Dual-DPD：單獨(dú)的光電二極管檢測器單元，通過導(dǎo)光桿連接到 ED?101US/MD 上，配置 NADPH 模塊時推薦選配。

2，Dual-DPM：單獨(dú)的光電倍增管檢測器單元，用于較稀的懸浮液熒光測量，需要裝配到 ED-101US/MD 上使用。必須要同時配置測量頭 DUAL-DB 或 DUAL-DR 來激發(fā)調(diào)制熒光。

3，ED-101US/T： 控溫裝置，安裝在 ED-101US/MD 上，為懸浮液控溫；可外接循環(huán)水浴來控溫,

4，US-SQS/WB： 球狀微型光量子探頭，可插入樣品杯中測量 PAR；由主機(jī) DUAL-C 控制。

5，PHYTO-MS：磁力攪拌器，連接到光學(xué)單元 ED-101US/MD 的底部對懸浮液進(jìn)行攪拌。

6，DUAL-OP：擬南芥等小葉片測量用適配器，特制透光小孔適配器套裝，直徑 7 mm、5 mm 和 3 mm，對于擬南芥等小葉片的 P700 測量非常重要！

產(chǎn)地：德國 WALZ

數(shù)據(jù)來源：光合作用文獻(xiàn) Endnote 數(shù)據(jù)庫，更新至 2021 年 1月，文獻(xiàn)數(shù)量超過 10000 篇

原始數(shù)據(jù)來源：Google Scholar

1.        Chovancek, E., et al. (2021). "The different patterns of post-heat stress responses in wheat genotypes: the role of the transthylakoid proton gradient in efficient recovery of leaf photosynthetic capacity." Photosynth Res.

2.        Grinberg, M. A., et al. (2021). "Effect of chronic β-radiation on long-distance electrical signals in wheat and their role in adaptation to heat stress." Environmental and Experimental Botany 184: 104378.

3.        Huang, W., et al. (2021). "The water-water cycle is not a major alternative sink in fluctuating light at chilling temperature." Plant Science: 110828.

4.        Méteignier, L.-V., et al. (2021). "Arabidopsis mTERF9 protein promotes chloroplast ribosomal assembly and translation by establishing ribonucleoprotein interactions in vivo." Nucleic Acids Research.

5.        Wang, Q., et al. (2021). "Effects of sulfur limitation on nitrogen and sulfur uptake and lipid accumulation in Scenedesmus acuminatus." Journal of Applied Phycology.

6.        Wang, Z., et al. (2021). "Characterization and functional analysis of phytoene synthase gene family in tobacco." BMC Plant Biology 21(1): 32.

7.        Amstutz, C. L., et al. (2020). "An atypical short-chain dehydrogenase–reductase functions in the relaxation of photoprotective qH in Arabidopsis." Nature Plants 6(2): 154-166.

8.        Bag, P., et al. (2020). "Direct energy transfer from photosystem II to photosystem I confers winter sustainability in Scots Pine." Nature communications 11(1): 6388.

9.        Basso, L., et al. (2020). "Collaboration between NDH and KEA3 Allows Maximally Efficient Photosynthesis after a Long Dark Adaptation." Plant Physiology 184(4): 2078-2090.

10.     Fréchette, E., et al. (2020). "Variation in the phenology of photosynthesis among eastern white pine provenances in response to warming." Global change biology n/a(n/a).

11.     Fu, H.-Y., et al. (2020). "The availability of neither D2 nor CP43 limits the biogenesis of photosystem II in tobacco." Plant Physiology.

12.     Galvis, V. C., et al. (2020). "H+ transport by K+ EXCHANGE ANTIPORTER3 promotes photosynthesis and growth in chloroplast ATP synthase mutants." Plant Physiology.

13.     He, L., et al. (2020). "Primary Leaf-type Ferredoxin1 Participates in Photosynthetic Electron Transport and Carbon Assimilation in Rice." Plant Journal n/a(n/a).

14.     Ishikawa, N., et al. (2020). "PsbQ-Like Protein 3 Functions as an Assembly Factor for the Chloroplast NADH Dehydrogenase-like Complex in Arabidopsis." Plant and Cell Physiology.

15.     Kalra, I., et al. (2020). "Chlamydomonas sp. UWO 241 exhibits high cyclic electron flow and rewired metabolism under high salinity." Plant Physiology: pp.01280.02019.

16.     Kusano, M., et al. (2020). "Cytosolic GLUTAMINE SYNTHETASE 1; 1 modulates metabolism and chloroplast development in roots." Plant Physiology.

17.     Lee, K., et al. (2020). "Lack of FIBRILLIN6 in Arabidopsis thaliana affects light acclimation and sulfate metabolism." New Phytologist 225(4): 1715-1731.

18.     Li, H., et al. (2020). "A rice chloroplast-localized ABC transporter ARG1 modulates cobalt and nickel homeostasis and contributes to photosynthetic capacity." New Phytologist n/a(n/a).

19.     López-Calcagno, P. E., et al. (2020). "Stimulating photosynthetic processes increases productivity and water-use efficiency in the field." Nature Plants 6(8): 1054-1063.

20.     Reiter, B., et al. (2020). "The Arabidopsis Protein CGL20 is Required for Plastid 50S Ribosome Biogenesis." Plant Physiology.

21.     Sanz-Luque, E., et al. (2020). "Metabolic control of acclimation to nutrient deprivation dependent on polyphosphate synthesis." Science Advances 6(40): eabb5351.

22.     Shinde, S., et al. (2020). "Glycogen Metabolism Supports Photosynthesis Start through the Oxidative Pentose Phosphate Pathway in Cyanobacteria." Plant Physiology 182(1): 507-517.

23.     Storti, M., et al. (2020). "Regulation of electron transport is essential for photosystem I stability and plant growth." New Phytologist n/a(n/a).

24.     Treves, H., et al. (2020). "Multi-omics reveals mechanisms of total resistance to extreme illumination of a desert alga." Nature Plants.

25.     Yang, Q., et al. (2020). "Two dominant boreal conifers use contrasting mechanisms to reactivate photosynthesis in the spring." Nature communications 11(1): 1-12.

26.     Zhang, C., et al. (2020). "Structural insights into NDH-1 mediated cyclic electron transfer." Nature communications 11(1): 888.