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蛋白質(zhì)濃度測定(雙縮脲法)實驗介紹

來源:上海嘉鵬科技有限公司   2022年05月04日 08:49  
實驗原理

測定蛋白質(zhì)的定量方法有很多,目前常用的有凱氏定氮法;比色法主要包括雙縮脲法、Folin-酚試劑法及 染料結(jié)合法;紫外分光光度法等
雙縮脲(Biuret)法:在堿性溶液中,雙縮脲(H2N—CO—NH—CO—NH2)與價銅離子作用形成紫紅色的絡(luò)合物,這反應(yīng)稱雙縮脲反應(yīng)。凡分子中含個或個以上酰胺基(—CO—NH2),或與此相似的基團[如—CH2—NH2,—CS—NH2,—C(NH)NH2]的任何化合物,無論這類基團直接相連還是通過個碳或氮原子間接相連,均可發(fā)生上述反應(yīng)。蛋白質(zhì)分子含有眾多肽鍵(—CO—NH—),可發(fā)生雙縮脲反應(yīng),且呈色強度在定濃度范圍內(nèi)與肽鍵數(shù)量即與蛋白質(zhì)含量成正比,可用比色法測定蛋白含量。與同樣處理的蛋白標準液比較,經(jīng)計算或查標準曲線即可求出血清總蛋白質(zhì)含量。
實驗試劑

1.6mol/L*溶液
稱取*(NaOH,純)240g,用新鮮蒸餾水配制成1L,置室溫貯存在密封的聚乙烯瓶里。
2.雙縮脲試劑
稱取未失結(jié)晶水的硫酸銅(CuSQ·5H20) 3.0g,溶于500m1新鮮蒸餾水中,加酒石酸鉀鈉(NaKC4H4O6.4H2O)9.0g,(KI)5.0g,待安全
溶解后,加入6mol/L*溶液100ml,后加蒸餾水至1L。室溫貯存在密閉的聚乙烯瓶里,約穩(wěn)定6個月。
3.蛋白標準液
可用商品血清蛋白標準液或定值質(zhì)控血清為標準。亦可收集混合新鮮血清,用凱氏定氮法標定后,加疊氮鈉防腐(疊氮鈉的終濃0.5~1.0g/L),冰凍
保存。
實驗設(shè)備

恒溫水浴箱、722(721)分光光度計、吸管、試管、坐標紙
實驗步驟

1. 配制20g/L蛋白標準液 如蛋白標準液濃度為70g/L,則取此液2m1,加入新鮮蒸餾水5ml,混勻即成。
2. 按表操作

加入物(ml) 空白管 1 2 3 4 5 測定管
20g/L蛋白標準液 ~ 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5 ~
蒸餾水 0.5 0.4 0.3 0.2 0.1 ~ 0.4
待測樣品液體 ~ ~ ~ ~ ~ ~ 0.1
雙縮脲試劑 3.0 3.0 3.0 3.0 3.0 3.0 3.0
相當血液蛋白質(zhì)(g/L) ~ 20 40 60 80 100
混勻,置37℃水浴10min(或25℃30min),用540nm波長比色,以空白管調(diào)零,讀取各管吸光度。
3. 標準曲線繪制
1—5為標準曲線管,測得吸光度后,以吸光度為縱坐標,蛋白質(zhì)濃度為橫坐標繪制標準曲線。
4. 實驗結(jié)果
根據(jù)測定管吸光度,從標準曲線查找相對應(yīng)的總蛋白濃度。

注意事項

1.雙縮脲試劑中,加入酒石酸鉀鈉,Cu2 形成穩(wěn)定的絡(luò)合銅離子,以防止CuSO4·5H20不穩(wěn)定形成Cu(OH)2沉淀。酒石酸鉀鈉與CuSO4·5H20之比
不低于3:1,加入KI作為抗氧化試劑。
2.雙縮脲試劑要封閉貯存.防止吸收空氣中的氧化碳。
3.本法各種蛋白質(zhì)的顯色程度基本相同,重復(fù)性好,幾乎不受溫度影響,唯缺點是靈敏度較低。
4.黃疸血清.嚴重溶血對本法有明顯干擾。

5.本法繪制的標準曲線是條通過原點的直線,在100g/L濃度之內(nèi)呈良好的線性關(guān)系。


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