SDS聚丙烯酰胺凝膠染色是蛋白質(zhì)研究的一個基礎(chǔ)方法。染色方法有很多，實際應(yīng)用中，考馬斯亮藍(lán)染色(考染)和銀染是運用的最多的方法。考馬斯亮藍(lán)G250在游離狀態(tài)下呈紅色，它與蛋白質(zhì)結(jié)合后變?yōu)樗{(lán)色，結(jié)合物在595 nm波長下有光吸收。其光吸收值與蛋白質(zhì)含量成正比，因此可用于蛋白質(zhì)的定量測定。

銀染實驗中，在堿性條件下，銀離子被還原成金屬銀，沉淀在蛋白質(zhì)的表面上顯色。蛋白電泳后的 SDS-聚丙烯酰胺凝膠在甲醇溶液中浸泡后，水洗后用溶液銀染，再水洗后用甲醇水溶液顯色。

與考染相比，銀染具有靈敏度高的優(yōu)點，很多做環(huán)境、植物、育種等方面的客戶，都會做銀染方面的實驗。銀染對于試劑的要求比較高，尤其對其中使用純水的水質(zhì)要求比較高。

一、儀器和試劑

乙酸(1%)，顯影液(2.5%和0.02%甲醛水溶液)，乙醇(30%)，固定液(乙醇:冰醋酸:水(30:10:60))，溶液(0.1%)，顯影液(將溶液A在850 mL去離子水中加入37 g NaCl和37 g CuSO4，再加入濃氨水直到深藍(lán)色沉淀形成然后溶解，定容至1 L)和溶液B(在900 mL去離子水中加入436 g ，定容至1 L)混合，加三倍水稀釋，立即使用

二、試驗方法

1. 通過SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳分離蛋白質(zhì);

2. 將凝膠浸泡在至少5倍體積的固定液中，室溫下平緩搖動4 - 12 h，使蛋白固定;

3. 棄去固定液，加至少5倍體積的30%乙醇，室溫下平緩搖動30 min;

4. 重復(fù)步驟3;

5. 棄去乙醇，加10倍體積的純水(去離子水)，室溫下平緩搖動10 min;

6. 重復(fù)步驟5兩次;

7. 棄去清洗用水，加5倍體積的溶液，室溫下平緩搖動30 min;

8. 棄去溶液，用純水(去離子水)漂洗凝膠兩面，每面20 s;

9. 加5倍體積的新鮮顯影液，室溫下平緩搖動，數(shù)分鐘內(nèi)出現(xiàn)蛋白質(zhì)的染色條帶，繼續(xù)至條帶清晰;

10. 用1%乙酸清洗凝膠終止反應(yīng)，再用純水(去離子水)水漂洗數(shù)次，每次10 min。

銀染后的凝膠可以通過凝膠成像系統(tǒng)或掃描儀轉(zhuǎn)化為照片，或者可以直接用手機拍攝。

在銀染實驗中，純水(去離子水)水質(zhì)非常重要，對實驗成功與否起著關(guān)鍵性的作用。有用戶在實驗中忽略了這一點，純水水質(zhì)不佳，導(dǎo)致氯離子含量超標(biāo)，浸泡時出現(xiàn)沉淀，沉淀在膠上，最后顯影的時候看到的是一片花花的亂象，影響了染色效果。

氯化銀的溶解度通常是2 ppm，氯離子是水中常見的一種離子雜質(zhì)，如果水中的氯離子超過2 ppm，即有可能出現(xiàn)雜質(zhì)，也就是說，對于銀染實驗，對于純水質(zhì)量的要求還是比較苛刻的，一般的反滲透純水(RO)設(shè)備，還難以達(dá)到要求。

另外，水中的顆粒物也會吸附銀離子沉淀顯色，污染背景，甚至讓好好的凝膠成了“大花臉”。因此制備出來的純水在使用前，還應(yīng)該通過0.22或0.45μm的過濾器預(yù)先過濾，以去除水中的顆粒物。

專業(yè)來講，銀染用水應(yīng)該盡量選用符合國標(biāo)《分析實驗室用水規(guī)格和試驗方法》(GB/T 6682-2008二級純水以上的水—電導(dǎo)率至少應(yīng)當(dāng)在 1 μS/cm以下。

因此，銀染用水應(yīng)當(dāng)使用EDI純水或者超純水，而RO 純水是不能滿足銀染用水需求。

國內(nèi)做實驗室EDI純水設(shè)備的廠家很少。滲源是國內(nèi)生產(chǎn)EDI實驗室純水設(shè)備的供應(yīng)商。滲源新一代SYH智能型一體化超純水系統(tǒng)可以同時制備EDI 純水和超純水。SYH生產(chǎn)的 EDI 純水水質(zhì)滿足銀染實驗，還可以用來配制其他相關(guān)實驗的試劑;超純水可以應(yīng)用于銀染實驗的上下游以及其他蛋白質(zhì)研究實驗，例如蛋白SDS-PAGE電泳、Western Blotting等。取水終端安裝的終端微濾器，可以制備無熱原(內(nèi)毒素)、核酸酶、細(xì)菌的超純水，用于生化分析和分子生物學(xué)。